QPCR

實驗原理

QPCR基于傳統(tǒng)的聚合酶鏈反應（PCR）技術(shù)，通過逐漸擴增目標DNA或cDNA的數(shù)量使其可檢測。與傳統(tǒng)PCR不同的是，qPCR在擴增過程中同時進行熒光信號的實時監(jiān)測。

qPCR的原理基于熒光探針（例如TaqMan探針或SYBR Green I染料）。這些探針通過與目標序列的特異性結(jié)合，在PCR過程中釋放熒光信號。

SYBR Green I：該染料能與DNA雙鏈結(jié)合，當PCR擴增產(chǎn)生新的雙鏈DNA時，SYBR Green I與其結(jié)合并發(fā)出熒光信號。

TaqMan探針：該探針由引物和熒光探針組成，熒光探針含有一個熒光染料和一個熒光猝滅劑。在PCR擴增過程中，熒光探針通過引物特異性結(jié)合到目標序列上，并且Taqpolymerase酵素的核酸酶活性會切除掉熒光探針上的猝滅劑，導致熒光染料釋放出信號。

 通過檢測PCR擴增過程中的熒光信號強度，可以確定目標序列相對起始數(shù)量。通常通過計算Ct值（熒光信號達到閾值的循環(huán)數(shù)）來衡量目標序列的豐度。通過構(gòu)建標準曲線或使用ΔCt方法，可以將待測樣本中目標序列的相對豐度與參考基因或?qū)φ战M進行比較。

實驗步驟

 提取核酸、反轉(zhuǎn)錄（僅適用于RNA樣本）、預處理、設計引物和探針、準備反應體系、執(zhí)行PCR循環(huán)、數(shù)據(jù)分析

應用途徑

1.定量分析未知模板；2.單個或多個基因表達譜分析

實驗結(jié)果